Recueil des méthodes de diagnostic des trypanosomoses animales d'origine africaine

Le présent recueil est constitué pour servir de référence pour les méthodes de diagnostic des trypanosomoses effectuées dans le laboratoire de référence de l’OIE sur les trypanosomoses animales d’origine africaine, CIRAD Montpellier, et le laboratoire partenaire qu’est le CIRDES, Bobo-Dioulasso, Burkina Faso, mais également dans les laboratoires partenaires nationaux et régionaux.

Il décrit les méthodes parasitologiques, sérologiques et de biologie moléculaire qui sont d’usage et font référence pour l’OIE dans le diagnostic des trypanosomoses africaines, conformément au chapitre 2.4.17 « TRYPANOSOMOSES (transmissibles par les tsétsés) » du manuel des tests de diagnostic et des vaccins pour les animaux terrestres de l'OIE. Il en donne les principales caractéristiques, permettant aux utilisateurs de réaliser les tests et d’interpréter justement les résultats de leurs études. Il décrit en détail l’ensemble des protocoles permettant à d’autres laboratoires régionaux ou nationaux d’adopter ces méthodes pour effectuer les tests indépendamment des laboratoires de référence de l’OIE, même s’il reste recommandé de conserver des liens constants avec ces laboratoires de référence pour assurer les contrôles de qualité. Il décrit les méthodes de contrôle de qualité qui sont nécessaires pour certifier la valeur des tests effectués.

A15-REC-RECUEIL_PROTOCOLES_TRYPANO-Fr (5 Mo)

A16-REC-COMPENDIUM_PROTOCOLES_TRYPANO-En (4 Mo)

Trypanosomiase humaine

Lejon V., Jamonneau V., Solano P. : Contribution à la construction des dossiers d’élimination de la THA comme problèmes de santé publiques dans les pays endémiques. OMS Hat-e-tag 2017, 2018, 2019.

SOP (Standard Operating Procedures) DiTECT-HAT : environ 40 SOP ont été produites par ce projet pour le diagnostic de la THA.

Lutte anti-vectorielle

Kagbadouno M.S., J.B. Rayaisse, I.D. Camara, W. Yoni., I. Barry, A.D. Camara, F. Dofini, B. Bucheton, P. Solano, M. Camara. La pose d’écrans de taille réduite pour lutter contre les glossines en zone de Mangrove. Fiche technique CIRDES N°47.

Rayaisse J.B., Salou E., Kaba D., Yoni W., Barry I., Dofini F., Solano P. Amélioration du rapport coût-efficacité de l’utilisation écrans contre les tsé-tsé du groupe palpalis: conception d’outils innovants. Fiche technique CIRDES N°48.

Pagabeleguem S., J.B. Rayaissé, MT. Seck, A. Parker, H. Adun, P. Takac, J. Carnogursky, MJB. Vreysen, I. Sidibé, G. Gimonneau, J. Bouyer. Sterile insect technique: Mature sterile male pupae packaging protocol. Fiche technique CIRDES N°49.

Salou E., Rayaisse J.B., Kaba D., Yoni W., Sanogo L., Barry I., Dofini F., Solano P., Kabore I. (2017). Techniques de domestication des glossines sauvages au laboratoire. Fiche technique CIRDES N° 50.

SOP du projet « targeting tsetse », 2018 :

• Use of tiny targets to control tsetse flies in Gambian HAT foci: standard operating procedures. LSTM/IRD/CIRDES. https://www.tsetse.org/sites/lstm-tsetse/files/content/attachments/2018-05-09/FinalisedSOPEnglishVersion-v01_0.pdf 
• Utilisation des “mini-écrans” pour la lutte contre les tsé-tsé dans les foyers de maladie du sommeil à T. b. gambiense. LSTM/IRD/CIRDES. https://www.tsetse.org/sites/lstm-tsetse/files/content/attachments/2019-01-24/Utilisation%20des%20Mini%20%C3%A9crans%20%20pour%20SOP-French-v01_GG_ITmjl1_1.pdf

Génétique des populations

Manual tecnico : Entrenamiento Basico para el manejo de programas de analisis de genetica de poblaciones y filogenia. SF Brenière y C Barnabé – Actualisation Juin 2016.

De Meeûs T. Initiation à la génétique des populations naturelles. Applications aux parasites et à leurs vecteurs - Avec CD-Rom PC/Mac. Editeur IRD.

Protéomique

Costales J., Telleria J. Manuel de proteomica. CISEAL/PUCE- IRD, 2018. 37 p.